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3D細胞培養|和ibidi一起拓展細胞培養維度

date:2023-12-21 16:11:49

   實驗實例:

  

  3D矩陣中的單細胞

  

  * HT-1080癌細胞在膠原基質球體和類器官培養中遷移的3D活細胞成像

  

  球體和類器官培養

  

  * 在確定的微圖案上形成球體

  

  * 當在灌注下培養時,球體生長率大大提高

  

  * 長期培養球體的活/死染色

  

  * PDAC細胞和成纖維細胞的類器官共培養

  

  * HT-1080癌細胞在3D膠原凝膠中的侵襲

  

  * 內皮細胞在3D膠原凝膠中的發芽

  

  * L929球體橫截面的共聚焦顯微鏡成像

  

  3D中的趨化性和遷移分析

  

  * 3D中I型膠原蛋白凝膠內皮細胞向FCS梯度的趨化性

  

  3D矩陣中的單細胞

  

  HT-1080癌細胞在膠原基質球體和類器官培養中遷移的3D活細胞成像

  

動圖1.gif

 

  將表達LifeAct的HT-1080細胞(綠色)接種在1.5毫克/毫升I型膠原蛋白,大鼠尾層(白色)的µ-Slide Chemotaxis細胞趨化載玻片中。通過使用水浸物鏡40x/1.2在蔡司共焦顯微鏡LSM 880 AxioObserver上每300秒拍攝一張照片來記錄細胞遷移。

  

  球體和類器官培養

  

  在確定的微圖案上形成球體

  

  微圖案是優化3D分析的強大工具。ibidi的µ-Slides With Multi-Cell µ-Patterns載玻片能夠為各種2D和3D細胞培養應用實現空間定義的細胞粘附。被Bioinert生物惰性包圍的確定的粘附點能夠從細胞懸浮液中捕獲所有粘附的單細胞。生物惰性是完全不可附著細胞的。這迫使所有細胞在粘附點處相互聚集,從而以一種確定和可控的方式形成球體 從而以確定和可控的方式形成球體。

  

640 (1).jpg

  

  NIH-3T3細胞(小鼠胚胎成纖維細胞)的球體形成。將單個細胞接種于µ-Slide 8 Well With Multi-Cell µ-Pattern腔室載玻片中。明場顯微鏡,10x物鏡。

  

640.jpg

  

  NIH-3T3細胞球狀體的形成,在將單細胞接種于µ-Slide VI 0.4 With Multi-Cell µ-Pattern通道載玻片中。相差顯微鏡,4x物鏡。

  

動圖2.gif

  

  NIH-3T3細胞(小鼠胚胎成纖維細胞)在200μm粘附點上的球狀體形成,記錄球狀體生成64小時。相差活細胞成像,4x物鏡。

  

  當在灌注下培養時,球體生長率大大提高

  

動圖3.gif

  

  L929成纖維細胞在µ-Slide spheroid Perfusion,生物惰性(ibidi 80350),第1-14天,接種濃度為5 × 10 5個單細胞/ml。左:不灌注,隔天換藥。右: ibidi Pump System 泵系統(流體剪切力系統)灌注,0.75 ml/min。相差顯微鏡,10 x物鏡,孔徑800µm。

  

  長期培養球體的活/死染色

  

640 (2).jpg

  

  使用 ibidi Pump System 泵系統(流體剪切力系統),灌注培養14天后,在µ-Slide spheroid Perfusion中對L929球體進行活/死FDA/PI染色,0.75 ml/min。綠色:活細胞(二乙酸酸熒光素,FDA);紅色:死細胞(碘化丙啶,PI)。寬場熒光顯微鏡,10x物鏡。

  

  PDAC細胞和成纖維細胞的類器官共培養

  

640 (3).jpg

  

  人胰腺癌(PDAC)細胞系PA-TU-8988T(綠色,用CellTrackerTM綠色染色)和小鼠成纖維細胞系mPSC4(紅色,用CellTrackerTM橙色CMTMR染色)在µ-Slide Spheroid Perfusion中共培養的類器官。µ-Slide上覆蓋25µm FEP箔,以便在垂直光片顯微鏡中匹配更接近水的折射率。該圖像是由S. Volkery在慕尼黑工業大學用M Squared Aurora Airy光束垂直光片裝置拍攝的。樣品由德國馬爾堡大學的K. Roth提供。

  

  HT-1080癌細胞在3D膠原凝膠中的侵襲

  

動圖4.gif

  

  將侵襲性人纖維肉瘤癌球體(HT-1080)包埋于ⅰ型膠原蛋白,大鼠尾凝膠中。在µ-Slide 8 Well中記錄對凝膠基質的侵入48小時。4倍物鏡,明場。

  

  內皮細胞在3D膠原凝膠中的發芽

  

動圖5.gif

  

  人類臍靜脈內皮細胞(HUVEC)球體的活細胞成像,嵌入由I型膠原蛋白,大鼠尾制成的3D凝膠中。在µ-Slide 8孔中記錄凝膠基質的發芽過程44小時,10倍和4倍物鏡,明場。

  

  L929球體橫截面的共聚焦顯微鏡成像

  

12-9.jpg

  

  在µ-Slide spheroid Perfusion中清除(紅色:phalloidin,青色:DAPI)后,染色的L929球體的橫截面共聚焦顯微鏡。球狀體的清除使得甚至在球狀體成纖維細胞的中心的細胞可見,同時保持球狀體的形態。 更多詳情請點擊查看“Protocol for Spheroid Culture, Staining, and Clearing for 3D Imaging”.數據由德國慕尼黑工業大學的Julian Hofmann和Selina J. Keppler提供。

  

  3D中的趨化性和遷移分析

  

  3D中I型膠原蛋白凝膠內皮細胞向FCS梯度的趨化性

  

動圖6.gif

  

  人臍靜脈內皮細胞(HUVEC)包埋在1.5µg/ml I型膠原凝膠中的活細胞成像,在µ-Slide Chemotaxis細胞趨化載玻片中,向胎牛血清遷移。注意:在趨化過程中,細胞相互連接形成字符串。相差,4x物鏡,24小時。

  

  訂購信息:

  

640 (4).jpg

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